基于超速离心与多维表征方法对不同来源的细胞外囊泡进行高效纯化与质量控制-白皮书_20页_4mb
报告摘要
基于超速离心与多维表征方法对不同来源的细胞外囊泡进行高效纯化与质量控制总结
核心内容
细胞外囊泡 (EV) 是一种具有重要临床转化潜力的生物分子载体,可用于疾病诊断与药物递送。然而,其规模化制备与标准化质控仍是行业发展的主要瓶颈。本白皮书通过恩泽康泰、Eppendorf 和 HORIBA 三方技术的协同应用,构建了一个“EV一体化解决方案”,以提升 EV 研究的可重复性、工艺可放大性与产品质量可信度。
主要观点
-
EV 的重要性:
- EV 作为细胞间通讯的媒介,可携带核酸、蛋白质、酶和脂质等生物大分子。
- 相比传统药物载体,EV 具有更好的生物相容性、靶向性、低毒性和高传递效率。
- 植物来源的 PELNs 具有无毒副作用、来源广泛、产量高、免疫原性低等优势,成为研究热点。
-
行业挑战:
- 规模化制备面临效率低、回收率不稳定、大体积处理能力不足等问题。
- 质控体系尚不完善,单一检测指标难以全面反映 EV 的质量。
- 技术碎片化导致实验结果可比性差,阻碍行业标准化发展。
-
技术协同方案:
- 恩泽康泰:提供样品预处理(如血浆纯化柱)、生物学验证(如 WB、TEM)及蛋白定量技术。
- Eppendorf:提供 CP80NX 超速离心机及多规格转子,实现高效、可放大的 EV 分离。
- HORIBA:集成 ViewSizer 3000(NTA)、SZ-100(Zeta 电位)和 LabRAM Soleil(拉曼光谱),构建多维质控体系,涵盖物理、化学和生化属性。
-
纯化工艺流程:
- 细胞上清:采用两步差速离心(P45AT 和 P27A 转子)进行纯化。
- 植物来源:使用 P45AT 和 P50A3 转子进行纯化,适用于大体积样品。
- 尿液来源:采用高通量超速离心(P27A + P50A3 转子)进行纯化。
- 血浆来源:推荐 SEC(分子排阻色谱)结合 UC(超速离心)的组合,以获得高纯度与稳定性。
关键信息
纯化与表征方法
- TEM:用于验证 EV 的“杯状”膜性结构。
- NTA:用于粒径与浓度量化,检测范围为 10nm-15μm,支持快速验证与工艺优化。
- BCA:用于蛋白浓度定量,辅助计算颗粒蛋白比以评估纯度。
- Zeta 电位:评估 EV 的稳定性,稳定阈值为 ±30mV。
- 拉曼光谱:用于无标记分析 EV 的化学组成,区分来源并评估纯度。
关键结果与发现
| 来源 | NTA粒径 (D50, nm) | 颗粒浓度 (particles/mL) | 均一性 (Span) | 蛋白含量 (μg/mL) | 颗粒蛋白比 (X10^6 particles/μg 蛋白) | Zeta电位 (mV) | 拉曼P/L (%) | 关键发现 |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| 细胞上清 | 82.9 | 2.07×10^9 | 1.63 | 230.67 | 9.0 | -26.7 | 60.4 | 蛋白背景高,稳定性最高 |
| 血浆 | 87.8 | 1.36×10^10 | 1.34 | 287.92 | 30.6 | -25.2 | 63.3 | 蛋白背景高,稳定性较高 |
| 植物愈伤组织 | 105.5 | 3.54×10^9 | 1.74 | 93.67 | 37.8 | -14.4 | 不适用 | 粒径更大,分布更宽 |
| 尿液 | 96.6 | 2.03×10^9 | 1.89 | 28.67 | 70.8 | -7.6 | 14.5 | 蛋白背景低,需关注聚集风险 |
血浆样本不同纯化方案对比
| 方案 | 颗粒浓度 (particles/mL) | 蛋白浓度 (μg/mL) | 拉曼P/L (%) | 结论与推荐场景 |
|---|---|---|---|---|
| DGC-Plasma | 1.07×10^9 | 21.83 | 4.01% | 极致纯度优先;适合机制研究,流程耗时 |
| UC-Plasma | 1.36×10^10 | 445.00 | 63.3% | 回收与流程平衡;建议加做正交质控 |
| SEC-Plasma | 1.05×10^11 | 364.17 | 20.3% | 快速筛查与均一性优先;建议结合 WB 污染标志物+拉曼P/L 判读 |
| SEC+UC-Plasma | 3.92×10^9 | 69.17 | 7.48% | 高质量 EV 方案;适合组学/功能/制剂研究 |
选型指南
| 来源 | 纯化策略 | 推荐组合 |
|---|---|---|
| 细胞上清 | 两次差速离心,可结合蔗糖垫差速离心提高回收率与纯度 | P27A/P45AT + P50A3 |
| 尿液、植物 | 大体积样品,大体积转子处理能力更强 | P27A + P50A3 |
| 血浆 | SEC+UC 二次富集,结合 WB 与拉曼进行正交质控 | 血浆SEC纯化柱 + P50A3 |
| 其他复杂样本 | 密度梯度离心实现高纯度,但回收率较低 | P28S + P50AT2 |
多维表征技术推荐
| 表征分析 | 核心表征组合 | 预期获得的关键质量属性 |
|---|---|---|
| 粒径与浓度表征回收率检测 | ViewSizer 3000 (NTA) + SZ-100 (Zeta) | 颗粒回收率、粒径分布均一性、工艺稳定性预警 |
| 分离纯度质控 | LabRAM Soleil (拉曼) + ViewSizer 3000 (NTA) | 低蛋白/脂质比 (P/L)、高颗粒蛋白比、标志物阳性 |
| 稳定性评估 | SZ-100 (Zeta) + ViewSizer 3000 | Zeta 电位绝对值 (>30mV)、加速稳定性试验后的粒径变化 |
| 来源特异性鉴别 | LabRAM Soleil (拉曼) + WB 验证 | 特征拉曼光谱指纹、标志物表达谱 |
展望与倡议
- 推动 EV 行业向“一体化工作流程”发展,形成新的解决方案联盟。
- 倡议行业共同探讨 EV 核心质量属性的检测标准,推动标准化进程。
- 为药物递送与诊断试剂开发者提供从工艺开发到质量研究的完整工具包与咨询服务。
- 鼓励更多领域伙伴加入,共同构建更完善的 EV 转化基础设施。
致谢
本研究得益于恩泽康泰在 EV 分离与检测方面的专业经验,Eppendorf 在高效分离技术上的贡献,以及 HORIBA 在光学表征与质控方面的支持。三方协作体现了跨领域技术整合对 EV 行业发展的推动作用。
参考文献
- Tian, J., Han, Z., Song, D., Peng, Y., Xiong, M., Chen, Z., Duan, S., & Zhang, L. (2023). Engineered exosome for drug delivery: Recent development and clinical applications. International Journal of Nanomedicine, 18, 7923-7940.
- Sha, A., Luo, Y., Xiao, W., He, J., Chen, X., Xiong, Z., Peng, L., Zou, L., Liu, B., & Li, Q. (2024). Plant-derived exosome-like nanoparticles: A comprehensive overview of their composition, biogenesis, isolation, and biological applications. International Journal of Molecular Sciences, 25(22), 12092.
- Chen, J., Li, P., Zhang, T., Xu, Z., Huang, X., Wang, R., & Du, L. (2022). Review on strategies and technologies for exosome isolation and purification. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 9, 811971.
- Webber, J., & Clayton, A. (2013). How pure are your vesicles? Journal of Extracellular Vesicles, 2, 19861.
- Welsh, J. A., van der Pol, E., Arkesteeljn, G. J. A., Asada, M., Bordanaba-Florit, G., Bremer, M., ... & Witwer, K. W. (2024). Minimal information for studies of extracellular vesicles (MISEV2023): From basic to advanced approaches. Journal of Extracellular Vesicles, 13, e12404.
- Ricciardi, A., De Angelis, B., Ricci, P., & Cinti, S. (2020). Raman spectroscopy characterization of the major classes of plasma lipoproteins. Vibrational Spectroscopy, 103073.
- Koster, H. J., Rojalin, T., Powell, A., & et al. (2021). Surface enhanced Raman scattering of extracellular vesicles for cancer diagnostics despite isolation dependent lipoprotein contamination. Nanoscale, 13(33), 14760-14776.
- Alice Gualerzi, Sander Alexander Antonius Kooijmans, Stefania Niada, Silvia Picciolini, Anna Teresa Brini, Giovanni Camussi & Marzia Bedoni (2019). Raman spectroscopy as a quick tool to assess purity of extracellular vesicle preparations and predict their functionality. Journal of Extracellular Vesicles, 8:1, 1568780.
- https://www.horiba.com/int/scientific/applications/biopharma/zeta-potential-of-proteins
- Bagio, D.A., Margono, A., & et al. (2025). Enhancing the Odontogenic Potential of Human Dental Pulp Stem Cells via Platelet-Rich Plasma Exosomes through Modulation of TGF-β1 and Dentin Sialophosphoprotein. European Journal of Dentistry.
- Xu, G., Jin, J., Fu, Z. et al. (2025). Extracellular vesicle-based drug overview: research landscape, quality control and nonclinical evaluation strategies. Sig Transduct Target Ther, 10, 255.
展开完整摘要
试读结束,高清完整版pdf/doc/ppt,请点下载